神经元基础培养基用于出产前/胚胎神经元细胞的培养，使用时需添加 B-27(JP9120)或 N-2(JP9121) 添加剂。可应用于海马神经元，大脑皮层和大脑其他区域的神经细胞的培养。该培养基可以在不添加胶质细胞饲养层的情况下，短长期或长期的维持神经细胞的同源群落存活。
        神经元基础培养基不含 L-谷氨酰胺 （Glutamine）、L-谷氨酸和 L-天冬氨酸，必须组合无血清添加剂 (例如 B-27 或 N-2 添加剂),或者血清和 0.5 mM L-谷氨酰胺，再或者血清和 0.5 mM L-丙胺酰-谷氨酰胺溶液。初次接种平板时，应加 入 25 µM L-谷氨酸。

准备培养基：
1、每 100 ml 神经元基础培养基添加 2 ml B27 添加剂（50 X），并加入终浓度 0.5 mM 的 L-谷氨酰胺 （Glutamine）或 L-丙胺酰-谷氨酰胺溶液；或者每 100 ml 神经元基础培养基添加 1 ml N-2 添加剂（100 X），并加入终浓度 0.5 ~ 2 mM 的 L-谷氨酰胺或 L-丙胺酰-谷氨酰胺溶液； 
2、原代神经元细胞首次接种平板时，应先加入 25 µM（3.7 μg/ml）L-谷氨酸。有些细胞系需要加入终浓度 2% 的血清促进细胞贴壁； 
3、可加入 25 µM β-巯基乙醇以延长海马神经元的存活时间； 
注意：培养基准备完全后，请避光保存在 2 ~ 8 ℃ 的环境里，并于一周内使用完毕。

细胞培养的条件：
培养基：神经元基础培养基 
细胞类型：贴壁细胞 
培养容器和设备：培养板，培养瓶和 CO₂ 恒温培养箱 
培养温度：36 ~ 38 ℃ 
培养条件：CO₂ 含量 5 % 的湿润空气，避光。 
实验前应对细胞培养仪器进行温度和空气的设置。 以下实验方案，均以 6 孔培养板为例。 

神经细胞培养：
原代神经元细胞的培养在神经生物学和药理学中都是必不可少的。科学家钟爱使用新分离的神经元细胞，因为它们保留着良好的功能性，但是考虑到获取不便，使用商品化的大鼠原代神经元细胞更具有灵活性，能够立即使用，同时其功能性等同于新分离的神经元细胞。而特定原代神经元细胞类型的获取，非常依赖操作者优化的实验方案。 

培养板培养细胞：
1、在 48 孔培养板或者其它培养器皿上包被冷的多聚 D-赖 氨酸溶液(0.05 mg/ml)。用于原代神经元细胞培养时，包被量 0.15 ml/cm²，室温下 1 小时； 
2、移去包被液，并用无菌水冲洗两次（包被液有细胞毒性，请冲洗彻底）； 
3、勿覆盖冲洗后的培养板，保证空中水分完全干燥。干燥后可立刻使用，或者可在 4 ℃ 的干燥环境中保存两周； 
4、接种细胞入培养板，每 60 ~ 150 μL神经元基础培养基和添加剂的混和培养基，接入 90 ~ 320 个/mm² 的细胞； 
5、放入培养箱培养一小时； 
6、倾斜培养板，将培养基轻轻吸出；
7、在孔中迅速加入 0.4 ml/孔 预热的神经元基础培养基和添加剂的混和培养基；
8、接种细胞后 3 ~ 4 天，首次更换培养基，以后每隔 3 天更换一次培养基；更换时，吸出一半旧培养基，加入等量新培养基。 
注意：培养成神经细胞瘤时，接种和替换的培养基中需要含 L-谷氨酰胺溶液。 

复苏： 
低温储藏复苏后的原代神经元细胞非常脆弱，请勿离心收集细胞！神经元细胞可以附着在塑料或者玻璃表面。为了最大程度复苏细胞，我们推荐在使用之前，请用培养基预冲洗所有塑料和玻璃表面。 
1、实验前请准备好多聚 D-赖氨酸溶液包被的无菌培养器皿；
2、在 37 ℃ 水浴中，迅速（< 1 分钟）溶解一小管冻存的细胞。最后一丝冰融化时，立刻从水浴中移出管子；
3、在完全培养基中冲洗移液器尖端，然后轻轻的吸取小管中溶解的细胞，并转移至预先用培养基冲洗过的 15 ml 圆锥管中；
4、用 1 ml 预热的培养基冲洗小管，然后用每秒钟 2 滴的速度滴到 15 ml 圆锥管中，每滴后轻摇混匀；
5、逐滴加入 2 ml 培养基，每滴后轻摇混匀，使管内悬液体积达到 4 ml； 
6、细胞计数； 
7、在多聚 D-赖氨酸溶液包被过的 48 孔板（或者 8 腔室盖玻片）的每个孔(或者腔室)中加入约 1 × 10⁵ 个细胞，并用培养基补充终体积至 500 μL；
8、放入培养箱培养； 
9、接种细胞后每隔 3 天更换一次培养基；更换时，吸出一半旧培养基，加入等量无 L-谷氨酰胺的新培养基。

2 ~ 8 ℃，避光，有效期12个月。

内毒素：≤1 EU/mL
渗透压：270 ~ 340 mOsm/kg·H20
pH 值：7.0 ~ 7.4

本产品供科学研究和生产使用，用于组织和细胞的体外培养。

红色澄清液体