DiR 是一个亲脂性、近红外荧光花青染料。这个染料常用于标记细胞质膜。DiR 的两个 18-碳链插入到细胞膜，从而进行特定的、稳定的细胞染色，几乎不会发生细胞间的染料转移。
        DiR（近红外荧光）和其他细胞膜荧光染料如 DiI（橙色荧光），DiO（绿色荧光），DiD（红色荧光）配合使用，为多色成像和流式细胞分析提供了有效的工具。
        DiR 染色后可进行多聚甲醛（不可使用甲醇等其他试剂）的固定，但不建议在染色后进行透化的过程。此外，在固定透化（室温下用进行质膜染色）。

细胞膜染色，细胞融合、粘附和迁移示踪剂，小动物成像。

95%

1、染色液制备：
（1）配置DMSO 或 EtOH 储存液：储存液用 DMSO 或 EtOH 配置浓度 1～5 mM。
注：未使用的储存液分装储存在-20℃，避免反复冻融。
（2）工作液制备：用合适的缓冲液（如：无血清培养基，HBSS 或 PBS）稀释储存液，配制浓度为 1～5μM 的工作液。
注：工作液最终浓度建议根据不同细胞系和实验体系来优化。 建议从推荐浓度的 10 倍范围内开始最优浓度的摸索。
2、悬浮细胞染色：
（1）加入适当体积的染色工作液重悬细胞，使其密度为 1×10 ⁶ /mL。
（2）37℃ 孵育细胞 2～20 min，不同的细胞最佳培养时间 不同。可以20 min 作为起始孵育时间，之后优化体系以得 到均一的标记结果。
（3）孵育结束，1000～1500 rpm离心5 min。倾倒上清液， 再次缓慢加入37 ℃预热的生长培养液重悬细胞。
（4）重复步骤（3）两次以上。
3、贴壁细胞的染色：
（1）将贴壁细胞培养于无菌盖玻片上。
（2）从培养基中移走盖玻片，吸走过量培养液，但表面要 保持湿润。
（3）在盖玻片的一角加入 100 μL 的染料工作液，轻轻晃动 使染料均匀覆盖所有细胞。
（4）37℃ 孵育细胞 2～20 min，不同的细胞最佳培养时间不同。可以20 min作为起始孵育时间，之后优化体系以得到均一的标记结果。
（5）吸干染料工作液，用培养液洗盖玻片 2～3 次，每次用预温的培养基覆盖所有细胞，孵育5～10 min，然后吸干培养基。但要使表面保持湿润。

−20°C干燥避光保存，产品有效期为12个月。

Ex(nm)：748   

1、DiR 染色固定的细胞或组织样品时，样品宜使用配制在PBS 中的 4% 多聚甲醛进行固定，使用其它不适当的固定液会导致荧光背景较高。
2、荧光染料均存在淬灭问题，请尽量注意避光，以减缓荧光淬灭。
3、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

细胞膜荧光探针DiR；DiR细胞膜染料;DiIC18(7)

蓝色至深蓝色油状固体

溶于DMF，DMSO，甲醇

Cheng Z, et al. (2004). Differential control over postganglionic neurons in rat cardiac ganglia by NA and DmnX neurons: anatomical evidence. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol 286, R625-33; Koo YE, et al. (2004). Real-time measurements of dissolved ox